L’analyse du LCR est un outil de diagnostic important dans l’investigation des patients neurologiques, mais elle présente des limites. La numération cellulaire et le taux de protéines du LCR peuvent être considérés comme l’analogue pour le SNC de la formule sanguine et du taux de protéines sériques. Les anomalies de la couleur, de la cellularité et du niveau de protéines du LCR sont fortement indicatives d’une maladie neurologique et contribuent souvent au diagnostic, mais elles ne sont pas spécifiques et ne fournissent qu’occasionnellement un diagnostic définitif par elles-mêmes. Les maladies du SNC ne provoquent pas non plus toujours des altérations du LCR – les anomalies dépendent de la localisation et de l’étendue de la lésion. Un traitement antérieur par des corticostéroïdes peut interférer avec le LCR et réduire le nombre de globules blancs et le pourcentage de neutrophiles. Le LCR doit idéalement être traité (ou conservé) dans les 30 minutes suivant le prélèvement, car les cellules se détériorent rapidement en raison de leur faible teneur en protéines.
Le prélèvement du LCR doit être effectué avant une myélographie, car les agents de contraste peuvent induire une irritation méningée et modifier le caractère du liquide en produisant une réponse inflammatoire. Les changements peuvent influencer l’analyse du LCR pendant au moins trois à cinq jours après le myélogramme.
Typiquement, une numération cellulaire totale, une numération cellulaire différentielle et un taux de protéines sont déterminés dans le LCR. Un taux de glucose est occasionnellement obtenu et correspond normalement à 60-80% du taux de glucose sanguin. Lorsqu’une maladie infectieuse est suspectée, une culture, une sérologie ou une PCR peuvent être réalisées. En cas de lymphome, la cytométrie de flux ou la PARR peuvent être utilisées pour confirmer le diagnostic.
Couleur et clarté
Le LCR normal est transparent, incolore et de consistance aqueuse.
Une hémorragie dans le LCR, survenant au minimum 10 heures avant le prélèvement, peut entraîner une xanthochromie – coloration jaune-orange, causée par la bilirubine provenant des érythrocytes métabolisés. Cette décoloration peut persister jusqu’à 2-4 semaines après l’hémorragie dans l’espace sous-arachnoïdien, mais elle disparaît généralement en 4-8 jours. D’autres causes de xanthochromie peuvent être un ictère sévère ou des taux de protéines du LCR nettement élevés.
La contamination sanguine entraînant un LCR de couleur rouge peut être iatrogène ou due à une hémorragie dans l’espace sous-arachnoïdien. Pour différencier simplement une hémorragie iatrogène d’une hémorragie pathologique, une partie de l’échantillon peut être centrifugée. Un surnageant xanthochromique indique une hémorragie pathologique, mais un surnageant incolore suggère une contamination iatrogène. Une hémorragie pathologique peut également être suspectée lorsqu’une érythrophagie, des hémosidérophages ou des cristaux d’hématoïdine sont observés lors de l’examen microscopique.
Un LCR trouble peut être dû à un nombre de cellules nettement élevé (> 500 GB/µl) ou à une augmentation des taux de protéines, ce qui rendra également le liquide plus visqueux.
Nombre de cellules
Le nombre normal de GB dans le LCR est de < 5 cellules/µl. Dans la numération différentielle, les cellules mononucléaires doivent prédominer (60-70% étant des petits lymphocytes et 30-40% des monocytes) et on ne trouve qu’occasionnellement des neutrophiles matures (< 1%, hors contamination sanguine). L’élévation des cellules nucléées dans le LCR est appelée pléiocytose.
Un plus grand nombre de leucocytes est attendu avec les maladies qui impliquent les méninges ou les cellules épendymaires, mais cela n’est pas corrélé avec la gravité de la maladie ou le pronostic. Les lésions parenchymateuses profondes, extradurales et nonfoliatives ne provoquent que des changements minimes ou nuls dans le LCR ou n’augmentent que les taux de protéines.
La pléiocytose cellulaire mononucléaire (mixte) est une augmentation du nombre de leucocytes avec une prédominance de lymphocytes et de macrophages. Elle est généralement associée à une méningo-encéphalite granulomateuse (GME) chez le chien. Les autres causes de pléiocytose à cellules mixtes sont les infections fongiques, protozoaires et rickettsies. Les méningo-encéphalites nécrosantes (encéphalite du Carlin/Maltais, du Yorkshire Terrier) provoquent généralement une pléiocytose essentiellement lymphocytaire. Ce type de pléiocytose peut également être observé dans les méningites virales (rage, maladie de Carré) et les lymphomes du SNC.
Une pléiocytose neutrophile est souvent associée aux infections bactériennes ou aux méningites répondant aux stéroïdes. Plus rarement, les neutrophiles peuvent prédominer dans certaines infections virales (maladie de Carré aiguë, PIF) ou fongiques, les méningiomes et la myélopathie embolique fibrocartilagineuse. Dans les cas de maladies infectieuses, les neutrophiles sont plus susceptibles d’être dégénérés que dans les troubles non infectieux. La culture du LCR doit être envisagée chez les animaux présentant une pléiocytose neutrophile, surtout si l’animal présente d’autres signes évocateurs d’une méningite bactérienne – pyrexie, neutrophilie périphérique et neutrophiles dégénérés dans le LCR.
La pléiocytose éosinophile est rare et peut être associée à une migration parasitaire aberrante dans le SNC, à des infections protozoaires, cryptococciques et protothécales, à la rage ou à la maladie de Carré, ou à une méningo-encéphalite éosinophile rare (répondant aux stéroïdes).
Un LCR normal ne devrait pas contenir d’érythrocytes, mais un faible nombre est fréquemment observé en raison d’une contamination sanguine iatrogène. La contamination sanguine peut interférer avec l’interprétation de la numération leucocytaire et une formule de correction peut être utilisée : chaque 500 RBCs/µl peut représenter 1 WBC/µl chez un chien et chaque 100 RBCs/µl pour 1 WBC/µl chez un chat ; mais parfois même des érythrocytes aussi élevés que 15.000/µl n’affectent pas de manière significative la numération leucocytaire.
Niveau de protéines
La concentration normale de protéines est plus élevée dans la région lombaire et présente généralement des valeurs < 45 mg/dl, par rapport au robinet cisternal qui contient < 25 mg/dl de protéines. La concentration de protéines dans le LCR étant beaucoup plus faible que dans les autres fluides corporels, elle ne peut être mesurée par réfractomètre. L’effet d’une hémorragie sur le taux de protéines est généralement faible – il faut environ 1 200 GR/µl pour augmenter la concentration de protéines de 1 mg/dl.
Une numération cellulaire normale avec un taux de protéines élevé est appelée dissociation albuminocytologique. Elle se produit lors de maladies qui altèrent la barrière hémato-encéphalique et permettent aux protéines de la circulation de pénétrer dans le SNC, d’augmenter la production de protéines dans le SNC ou d’obstruer le flux de liquide dans le SNC (lésion compressive extradurale comme IVDD, masse intramédullaire, traumatisme, vascularite, nécrose ischémique du SNC, myélopathie dégénérative…).
LITERATURE:
Dewey C. W., Da Costa R. C. : Guide pratique de neurologie canine et féline, 3e éd. Wiley Blackwell, 2016
Platt S. R., Olby N. J. : Manuel de neurologie canine et féline de la BSAVA, 3e éd. BSAVA, 2004